El objetivo de este trabajo fue contribuir al desarrollo de los sistemas productivos de animales de granja. Se realizó el desarrollo de una matriz transportadora del inóculo probiótico Lactobacillus reuteri DSPV002C. Se seleccionaron dos matrices de gelatina y almidón (G:A) con diferentes concentraciones finales (G:A7,5 y G:A20). La liofilización fue el método más eficiente para el secado de las matrices. Luego, L. reuteri DSPV002C fue incorporada, en diferentes proporciones inóculo:matriz y se utilizaron permeado de suero (PS) o maltodextrina (M) como crioprotectores. La mayor cantidad de microorganismos probióticos viables fueron en G:A7,5 y G:A20 utilizando la proporción 9:1 y el PS como crioprotector. Se evaluó la viabilidad de las macrocápsulas en el tiempo en diferentes condiciones de almacenamiento, siendo G:A7,5PS 9:1 conservadas en congelamiento y vacío, las de mayores recuentos de bacterias viables hasta los 210 días. La macrocápsula G:A7,5PS 9:1 fue capaz de proteger al inóculo en condiciones gastrointestinales simuladas, mostrando pérdidas de viabilidad menores que el cultivo libre. La viabilidad en las macrocápsulas incorporadas al alimento de los cerdos, conservadas a temperatura ambiente, fue influenciada por el alimento y la atmosfera. La administración de L. reuteri DSPV002C encapsulada a cerdos durante 42 días, no modificó las poblaciones bacterianas evaluadas en materia fecal. El método de monitoreo de clones resistentes fue adecuado a nuestro propósito. El tratamiento aumentó la relación vellosidad/cripta en el duodeno de los cerdos. Es probable que un efecto probiótico más marcado no fue observado, debido al sacrificio de los lechones luego de 42 días.
The aim of this study was to contribute to the development of farm animal production systems. The development of a transporter matrix of the probiotic inoculum Lactobacillus reuteri DSPV002C was carried out. Two matrices compound of gelatin and starch (G:S) with different final concentrations (G:S7.5 and G:S20) were selected. Lyophilization was the most efficient method for drying the matrices. Later, L. reuteri DSPV002C was incorporated, in different inoculum:matrix proportions and whey permeate (PS) or maltodextrin (M) were included as cryoprotectants. The highest number of viable probiotic microorganisms were in G:S7.5 and G:S20 using the 9:1 ratio and whey permeate as cryoprotectant. The viability of the macrocapsules was evaluated over time under different storage conditions, being G:S7.5PS 9:1 preserved in freezing and vacuum, those with the highest counts of viable bacteria up to 210 days. The G:S7.5PS 9:1 macrocapsule was able to protect the inoculum under simulated gastrointestinal conditions, showing lower viability losses than the free culture. The viability of the macrocapsules incorporated into the pig feed, kept at room temperature, was influenced by the feed and the atmosphere. The administration of encapsulated L. reuteri DSPV002C to pigs for 42 days did not modify the bacterial populations evaluated in fecal matter. The resistant clone monitoring method was adequate for our purpose. The treatment increased the villi / crypt ratio in the duodenum of pigs. It is probable that a more marked probiotic effect was not observed, due to the slaughter of the piglets after 42 days.