Primer registro de nematodos zoonóticos de transmisión alimentaria (Nematoda: Anisakidae) en músculo de Cynoscion guatucupa (pescadilla de calada) y Macrodon ancylodon (pescadilla de red) comercializado en Uruguay
DOI:
https://doi.org/10.14409/favecv.2022.0.e0009Palabras clave:
Anisákidos, diagnóstico, Cynoscion guatucupa, Macrodon ancylodon, músculo, salud pública, UruguayResumen
En los últimos 4 años, Uruguay ha experimentado una creciente demanda por el consumo de alimentos a base de pescado crudo, tales como sushi, sashimi y ceviche. Este escenario generó la necesidad de evaluar la presencia y concentración de parásitos zoonóticos (Nematoda: Anisakidae) en porciones comestibles de especies de pescado comercializadas en el mercado local. Se analizaron 233 ejemplares de tres especies de pescado comercializadas en Uruguay: Macrodon ancylodon, Micropogonias furnieri y Cynoscion guatucupa. Se cuantificaron e identificaron, a nivel de género, nematodos en cavidad celómica y músculo, estableciendo finalmente los descriptores ecológicos para cada género encontrado y para cada especie de pescado evaluada. Dos de las especies evaluadas se encontraban parasitadas a nivel de cavidad celómica y tejido muscular, M. ancylodon y C. guatucupa. Cynoscion guatucupa resultó la especie mayormente parasitada con una prevalencia de 46%, mientras que el género de anisákido más prevalente fue Contracaecum (prevalencia de 35,1% en C. guatucupa y 32,4% en M. ancylodon). El hallazgo de anisákidos en la especie M. ancylodon representa un nuevo registro de hospedador en Uruguay. Por otra parte, se reporta por primera vez en el país la presencia de estos parásitos zoonóticos en porciones comestibles (músculo).
Citas
Abollo E, Gestal C, Pascual S. 2001. Anisakis infestation in marine fish and cephalopods from Galician waters: An updated perspective. Parasitol. Res. 87: 492-499.
Bush AO, Lafferty KD, Lotz JM, Shostak AW. 1997. Parasitology Meets Ecology on Its Own Terms: Margolis et al. Revisited. J. Parasitol. 83: 575-583.
Bao M, Pierce GJ, Pascual S, González-Munõz M, Mattiucci S, Mladineo I, Cipriani P, Bušelić I, Strachan NJC. 2017. Assessing the risk of an emerging zoonosis of worldwide concern: Anisakidosis. Sci. Rep. 7: 1-17.
Botto C, Osimani J, Mañé F. 1976. Sobre la presencia de larvas de Anisakis sp. en peces de la costa Atlántica Uruguaya y su patogenicidad experimental para el perro y el gato. Revta. Urug. Patol. Clin. Microbiol. 3: 49-62.
Braicovich PE, Timi JT. 2008. Parasites as biological tags for stock discrimination of the Brazilian flathead Percophis brasiliensis in the south-west Atlantic. J. Fish Biol. 73: 557-571.
Cipriani P, Acerra V, Bellisario B, Luca G, Cheleschi R, Nascetti G, Mattiucci S. 2016. Larval migration of the zoonotic parasite Anisakis pegreffii (Nematoda: Anisakidae) in European anchovy, Engraulis encrasicolus: Implications to seafood safety. Food Control 59: 148-157.
Cordero del Campillo M, Rojo F. 1999. Parasitología Veterinaria. 1ª Edición. Madrid. Mc Graw - Hill - Interamericana de España. 987 pp.
Danilewicz D, Rosar F, Bastida R, Marigo J, Muelbert M, Rodríguez D, Lailson Brito Jr J, Ruoppolo V, Ramos R, Bassoi M, Ott PH, Caon G, Monteiro da Rocha A, Catâo-Días JL, Secchi ER. 2002. Report of the working group on biology and ecology. Lat. Am. J. Aquat. Mamm. 1: 25-42.
Delgado, E., Fagerholm, H. P. & R. Ponce de León. 2003. Larvae of Contracaecum Railliet & Henry, 1912 (Nematoda, Anisakidae) in Hoplias malabaricus (Bloch, 1794) (Pisces, Erythrinidae) from Northeastern Uruguay. Actas VII Jornadas de Zoología del Uruguay, 13-17/10/2003, Facultad de Ciencias, Montevideo, Uruguay. 53 pp.
Delgado G. 2010. Determinación de larvas de anisákidos en Cynoscion guatucupa (Pescadilla) e Illex argentinus (Calamar). Tesis de Grado. Facultad de Veterinaria: Universidad de la República.
Delgado C, García G. 2015. Coevolution between Contracaecum (Nematoda, Anisakidae) and Austrolebias (Cyprinodontiformes, Rivulidae) host-parasite complex from SW Atlantic coastal basins. Parasitol. Res. 114: 913-927.
Di Azevedo MIN, Iñiguez AM. 2018. Nematode parasites of commercially important fish from the southeast coast of Brazil: Morphological and genetic insight. Int. J. Food Microbiol. 267: 29-41.
EFSA (European Food Safety Authority). 2010. Scientific Opinion on risk assessment of parasites in fishery products. EFSA J. 8: 1543.
Eiras JC, Pavanelli GC, Takemoto RM, Nawa Y. 2018. Fish-borne nematodiases in South America: Neglected emerging diseases. J. Helminthol. 92: 649-654.
Eiras JC, Pavanelli GC, Takemoto RM, Yamaguchi MU, Karkling LC, Nawa Y. 2016. Potential risk of fish-borne nematode infections in humans in Brazil – Current status based on a literature review. Food Waterborne Parasitol. 5: 1-6.
Falla-Zuñiga LF, Castellanos-Garzón JA, Salazar L, Pustovrh MC. 2021. Anisakis and anisákidosis: Hosts and case reports in South America. systematic review. Rev. Fac. Med. 69: 1-19.
Fontenelle G, Knoff M, Nunes Felizardo N, Silva Lopes LM, Carmona de São Clemente S. 2013. Nematodes of zoonotic importance in Cynoscion guatucupa (Pisces) in the state of Rio de Janeiro. Rev. Bras. Parasitol. 22: 281-284.
Friss de Kereki, C. 2009. Determinación de larvas de nematodes de la familia Anisakidae en pescadilla de calada (Cynoscion guatucupa) y en calamar (Illex argentinus), capturados en el Río de la Plata y en el Atlántico sudoccidental y comercializados en Uruguay. Tesis de Maestría. Facultad de Ciencias Veterinarias: Universidad de Buenos Aires. 37 pp.
Fujimoto RY, de Melo Braun Sarmento A, Daniel Guerreiro Diniz D, Costa Eiras J. 2012. Nematode Parasites of Pescada Gó, Macrodon ancylodon Bloch and Schneider, 1801 (Osteichthyes, Sciaenidae), from Vila dos Pescadores, Bragança-PA, Brazil. Braz. Arch. Biol. Technol. 55: 865-870.
Galeano NA. 2017. Evaluación del potencial zoonótico de Contracaecum spp. (Nematoda:Anisakidae) e Hysterothylacium spp. (Nematoda: Raphidascarididae) como agentes de anisákidosis humana. PhD Thesis. Universidad Nacional del Sur. Bahia Blanca, Argentina. George-Nascimento M, Urrutia X. 2000. Pseudoterranova cattani sp. nov. (Ascaridoidea: Anisakidae), a parasite of the South American sea lion Otaria byronia De Blainville from Chile. Rev. Chil. de Hist. Nat. 73: 93-98.
Hernández-Orts JS, Aznar FJ, Blasco-Costa I, García NA, Víllora-Montero M, Crespo EA, Raga JA, Montero FE. 2013. Description, microhabitat selection and infection patterns of sealworm larvae (Pseudoterranova decipiens species complex, nematoda: Ascaridoidea) in fishes from Patagonia, Argentina. Parasit. Vectors 6: 252.
Irigoitia MM, Braicovich PE, Lanfranchi AL, Farber MD, Timi JT. 2018. Distribution of anisakid nematodes parasitizing rajiform skates under commercial exploitation in the Southwestern Atlantic. Int. J. Food Microbiol. 267: 20-28.
Irigoitia MM, Palomba M, Braicovich PE, Lanfranchi AL, Denuncio PE, Gana JCM, Mattiucci S, Timi JT. 2021. Genetic identification of Anisakis spp. (Nematoda: Anisakidae) from cetaceans of the Southwestern Atlantic Ocean: ecological and zoogeographical implications. Parasitol. Res. 120: 1699-1711.
Katz H, Morgades D, Castro-Ramos M. 2012. Pathological and Parasitological Findings in South American Fur Seal Pups (Arctocephalus australis) in Uruguay . ISRN Zoology. 1-7.
Knoff M, De São Clemente SC, Pinto RM, Gomes DC. 2001. Nematodes of Elasmobranch Fishes from the Southern Coast of Brazil. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 96: 81-87.
Mancini MA, Biolé FG, Salinas VH, Guagliardo SE, Tanzola RD, Morra G. 2014. Prevalencia, intensidad y aspectos ecológicos de Contracaecum sp. (Nematode: Anisakidae) en peces de agua dulce de Argentina. Neotrop. Helminthol. 8: 111-122.
Margolis L, Esch GW, Holmes JC. 1982. The use of ecological terms in parasitology (report of an ad hoc committee of the American society of parasitologists). J. Parasitol. 68: 131-133.
Mattiucci S, Cianchi R, Nascetti G, Paggi L, Sardella N, Timi J, Webb SC, Bastida R, Rodríguez D, Bullini L. 2003. Genetic evidence for two sibling species within Contracaecum ogmorhini Johnston & Mawson, 1941 (Nematoda: Anisakidae) from otariid seals of boreal and austral regions. Syst. Parasitol. 54: 13-23.
Measures LN. 2014. Anisakiosis and pseudoterranovosis: Reston, Va., U.S. Geological Survey Circular 1393. 34 pp.
Nadler SA, D’Amelio S, Dailey MD, Paggi L, Siu S, Sakanari JA. 2005. Molecular phylogenetics and diagnosis of Anisakis, Pseudoterranova, and Contracaecum from northern pacific marine mammals. J. Parasitol. 91: 1413-1429.
Rodrigues MV, Del Fava C, Pérez ACA. 2010. Determinação do parasita anisaquídeo em pescada (Cynoscion spp.) como ponto crítico de controle na cadeia produtiva do pescado comercializado na baixada santista. Rev. Educação Continuada em Medicina Veterinária e Zootecnia do CRMV-SP. 9: 32-32.
Sabas CSS, Luque JL. 2003. Metazoan parasites of weakfish, Cynoscion guatucupa and Macrodon ancylodon (Osteichthyes: Sciaenidae), from the coastal zone of the state of Rio de Janeiro, Brazil. Rev. Bras. Parasitol. 12: 171-178.
Sardella NH, Etchegoin JA, Martorelli SR. 1995. Las comunidades parasitarias de Micropogonias furnieri (corvina) en Argentina. Boletín Del Instituto Oceanográfico de Venezuela 34: 41-47.
Shamsi S, Ghadam M, Suthar J, Ebrahimzadeh Mousavi H, Soltani M, Mirzargar S. 2016. Occurrence of ascaridoid nematodes in selected edible fish from the Persian Gulf and description of Hysterothylacium larval type XV and Hysterothylacium persicum n. sp. (Nematoda: Raphidascarididae). Int. J. Food Microbiol. 236: 65-73.
Smith JW, Wootten R. 1975. Experimental Anisakis sp. larvae (Nematoda: Ascaridida) into the flesh of herring, Clupea harengus. Int. J. Parasitol. 5: 133-136.
Soares IA, Lanfranchi AL, Luque JL, Haimovici M, Timi JT. 2018. Are different parasite guilds of Pagrus pagrus equally suitable sources of information on host zoogeography? Parasitol. Res. 117: 1865-1875.
Timi JT, Sardella NH, Navone GT. 2001. Parasitic nematodes of Engraulis anchoita Hubbs et Marini, 1935 (Pisces, Engraulidae) of the Argentine and Uruguayan coasts, South West Atlantic. Acta Parasitol. 46: 186-193.
Timi JT, Luque JL, Sardella NH. 2005. Parasites of Cynoscion guatucupa along South American Atlantic coasts: evidence for stock discrimination. J. Fish Biol. 67: 1603–1618.
Timi JT, Paoletti M, Cimmaruta R, Lanfranchi AL, Alarcos AJ, Garbin L, George-Nascimento M, Rodríguez DH, Giardino GV, Mattiucci S. 2014. Molecular identification, morphological characterization and new insights into the ecology of larval Pseudoterranova cattani in fishes from the Argentine coast with its differentiation from the Antarctic species, P. decipiens sp. E (Nematoda: Anisakidae). Vet. Parasitol. 199: 59-72.
USDA (United State Department of Agriculture) Foreign Agricultural Service. 2016. China Published Final Standard for Processed Aquatic Products of Animal Origin. GAIN Report Number CH16010. 7 pp.
Vettorazzi R. 2016. Estudio taxonómico de la parasitofauna de Odontesthes argentinensis Valenciennes, 1835) de las lagunas de Rocha y Garzón (Uruguay). Tesina de Grado. Facultad de Ciencias: Universidad de la República. 72 pp.
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