Eliminação de ovos de pequenos estróngilos fortes na matéria fecal de equídeos e sua importância prática na possibilidade de tratamentos seletivos
DOI:
https://doi.org/10.14409/favecv.v19i1.8977Palavras-chave:
cabalhos, pequenos estróngilos, opg, tratamento seletivo, ArgentinaResumo
Pequenos estróngilos fortes são os parasitas mais prevalentes e importantes em equídeos em todo o mundo, e o amplo desenvolvimento da resistência desses nematóides aos anti-helmínticos está impulsionando a aplicação de tratamentos seletivos (ST) para diminuir ou retardar o desenvolvimento destes. fenômenos. Essa estratégia é baseada na contagem de ovos de nematóides na matéria fecal de todos os membros do grupo animal para tratar apenas aqueles que excedem um determinado limite ou são cortados. Este princípio da ST é favorecido pela consistência da contagem de ovos por grama de fezes (hpg) em equinos e está sendo usado em alguns países do hemisfério norte, principalmente em animais adultos. Na Argentina, faltam informações básicas sobre condições climáticas, pastoreio e manejo que podem resultar em cargas parasitas e transmissão de nematóides diferentes daqueles observados no hemisfério norte. Nesse contexto, o objetivo deste estudo foi caracterizar a eliminação de ovos de pequenos estilos fortes em 436 equinos de diferentes idades pertencentes a 19 estabelecimentos da região central da Argentina. 90% dos eqüinos apresentaram ovos fortes nas fezes e os valores de hpg foram menores que 200 e maiores que 1.000 em 32% e 22% dos eqüinos, respectivamente. A distribuição de ovos de estilo forte entre indivíduos de todas as idades foi superespalhada ou agregada, com média aritmética geral de 671,59 ± 789,76 e valor do parâmetro de agregação inversa ko de 0,72 (distribuição da binomial negativo). A idade dos animais (potros vs. adultos) e os biótipos (esportes versus trabalho) na categoria de adultos influenciaram a magnitude dos valores de hpg (p <0,001). Nesta última categoria, 35% dos animais foram responsáveis pela excreção de aproximadamente 80% dos ovos eliminados nas pastagens. Embora existam algumas diferenças com o que é observado em países do hemisfério norte com populações parasitárias mais agregadas ou super dispersas, o TS para o controle de pequenos estilos fortes em equinos adultos também pode ser uma estratégia válida em nossas condições para diminuir a pressão de seleção. sobre o genoma parasitário e permitir o desenvolvimento de populações em refúgiosReferências
Anziani O y Ardusso G. 2017. Resistencia antihelmíntica en nematodes intestinales que parasitan a los equinos en la Argentina. RIA. 43: 24-35.
Becher A, Mahling M, Nielsen M, Pfister K. 2010. Selective anthelmintic therapy of horses in the Federal states of Bavaria (Germany) and Salzburg (Austria): An investigation into strongyle egg shedding consistency. Vet. Parasitol. 171: 116-122.
Becher A, van Doorn D, Pfister R, Kaplan R, Reist M, Nielsen M. 2018. Veterinary parasitology equine parasite control and the role of national legislation – A multinational questionnaire survey. Vet. Parasitol. 259: 6-12.
Boersema J, Eysker M, Maas J, van der Aar W. 1996. Comparison of the reappearance of strongyle eggs in foals, yearlings, and adult horses after treatment with ivermectin or pyrantel. Vet. Quart. 18: 7-9.
Brady H and Nichols W. 2009. Drug resistance in equine parasites: an emerging global problem. J. Equine Vet. Sci. 29: 285-295.
Caffe G, Paz Benard B, Cerutti J, Cooper L, Signorini M, Anziani O. 2018. Resistencia antihelmíntica en equinos. Observaciones sobre el período de reaparición de huevos luego del tratamiento con ivermectina en potrancas y yeguas madres. FAVE Cienc. Vet. 17: 40-44.
Chapman M, French D, Klei T. 2003. Prevalence of strongyle nematodes in naturally infected ponies of different ages and during different seasons of the year in Louisiana. J. Parasitol. 89: 309-314.
Kaplan RM, Nielsen MK. 2010. An evidence-based approach to equine parasite control: It ain’t the 60s anymore. Equine Vet. Educ. 22: 306-316.
Leathwick D, Sauermann C, Nielsen M. 2019. Managing anthelmintic resistance in cyathostomin parasites: Investigating the benefits of refugia-based strategies. Int. J. Parasitol. Drug. 10: 118-124.
Lichtenfels JR, Kharchenko VA, Dvojnos GM. 2008. Illustrated identification keys to strongylid parasites (strongylidae: Nematoda) of horses, zebras and asses (Equidae). Vet. Parasitol. 156:4-161.
Love S, Murphy D, Mellor D. 1999. Pathogenicity of cyathostome infection. Vet. Parasitol. 85: 113-122.
Matthews J, Archer D, Hodgkinson J. 2016. A questionnaire study of parasite control practices on Thoroughbred stud farms in the UK prevalence and epizootiology of equine. Equine Vet. J.48: 5.
Morgan E, Cavill L, Curry G, Wood R, Mitchell E. 2005. Effects of aggregation and sample size on composite faecal egg counts in sheep. Vet. Parasitol. 131: 79-87.
Nielsen MK, Pfister K, Von Samson-Himmelstjerna G. 2014. Selective therapy in equine parasite control-Application and limitations. Vet. Parasitol. 202: 95-103.
Nielsen, M.K., Reinemeyer, C., 2018. Anthelmintic resistance., en: Nielsen, M., Reinemeyer, C. (Eds.), Handbook of equine parasite control. Wiley-Blackwell, Hoboken, p. 284.
Nielsen MK, Sauermann C, Leathwick D. 2019. The effect of climate, season, and treatment intensity on anthelmintic resistance in cyathostomins: A modelling exercise. Vet. Parasitol. 269: 7-12.
Nielsen MK, Baptiste KE, Tolliver SC, Collins SS, Lyons ET. 2010. Analysis of multiyear studies in horses in Kentucky to ascertain whether counts of eggs and larvae per gram of feces are reliable indicators of numbers of strongyles and ascarids present. Vet. Parasitol. 174: 77-84
Relf V, Morgan E, Hodgkinson J, Matthews J. 2012. A questionnaire study on parasite control practices on UK breeding. Equine Vet. J. 44: 466-471.
Relf V. Morgan E, Hodgkinson J, Matthews J. 2013. Helminth egg excretion with regard to age, gender and management practices on UK Thoroughbred studs. Parasitology 140: 641-652.
Roberts F and O’Sullivan P. 1949. Methods for egg counts and larval cultures for strongyles infesting the gastro-intestinal tract of cattle. Aust. J. Agr. Res. 1: 99-103.
Russell AF. 1948. The development of helminthiasis in Thoroughbred foals. J. Comp. Pathol. Ther. 58: 107-127.
Salas-Romero J, Gómez-Cabrera K, Aguilera-Valle L, Bertot J, Salas J, Arenal A, Nielsen M. 2017. Helminth egg excretion in horses kept under tropical conditions—Prevalence, distribution and risk factors. Vet. Parasitol. 243: 256-259.
Scott I, Bishop RM, Pomroy WE. 2015. Anthelmintic resistance in equine helminth parasites – a growing issue for horse owners and veterinarians in New Zealand? N. Z. Vet. J. 63: 188-198.
Shaw D, Grenfell B, Dobson A. 1998. Patterns of macroparasite aggregation in wildlife host populations. Parasitology 117: 597-608.
Stratford CH, Lester HE, Morgan ER, Pickles KJ, Relf V, Mcgorum BC, Matthews JB. 2014. A questionnaire study of equine gastrointestinal parasite control in Scotland. Equine Vet. J. 46: 25-31.
Van Wyk J.2001. Refugia - Overlooked as perhaps the most potent factor concerning the development of anthelmintic resistance. Onderstepoort J. Vet. Res. 68: 55-67.
Von Samson-Himmelstjerna G. 2012. Anthelmintic resistance in equine parasites - detection, potential clinical relevance and implications for control. Vet. Parasitol. 185: 2-8.
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