Las semillas de malezas en la cosecha de soja: ¿Amenaza para los sistemas agrícolas?
DOI:
https://doi.org/10.14409/fa.2024.23.e0022Palabras clave:
semillas, malezas, soja, amenazaResumen
Las malezas constituyen adversidades importantes para el desarrollo, cosecha y rendimiento de los cultivos. Las prácticas agronómicas modifican las comunidades de malezas, según las características de las especies: producción de semillas, fenología, morfología, resistencia a herbicidas. El objetivo de este estudio fue caracterizar la comunidad de especies cuyas semillas están presentes en granos de soja cosechados en el centro-oeste de la provincia de Entre Ríos. Se tomaron muestras de soja de las campañas 2020 y 2021 en cuatro Departamentos de la provincia de Entre Ríos (Argentina). Se describió la fracción de Otras Semillas de cada muestra por su tamaño y riqueza específica; se calculó la abundancia relativa y frecuencia de especies por muestra; y la diversidad específica de la comunidad. Se estableció la similitud florística entre campañas y entre Departamentos y se sometieron las muestras a un análisis multivariado para detectar agrupamientos. No hubo diferencias significativas en tamaño y riqueza de la fracción entre campañas ni entre Departamentos. Se determinó una única comunidad representativa de ambas campañas con marcada dominada de Amaranthus hybridus L. y Echinochloa crus-galli (L.) de reconocida habilidad competitiva y resistencia múltiple a herbicidas. La comunidad de Otras Semillas en soja es una potencial amenaza para los sistemas agrícolas, por la dispersión de semillas de especies resistentes hacia nuevas áreas; y por su perpetuación en el banco de semillas del suelo.
Citas
Alonso, C. S. y Bornand, C.L. (2021). Dinámica de emergencia de malezas primavera-estivales en Villa Mercedes, San Luis, Argentina. Revista Científica y Técnica Agropecuaria, Agroindustrial y Ambiental, 8, 2. http://servicios.ingenieria.unlz.edu.ar:8080/ojs/index.php/agrarias/article/view/87
Alshallash. K. (2018). Germination of weed species (Avena fatua, Bromus catharticus, Chenopodium album and Phalaris minor) with implications for their dispersal and control. Annals of Agricultural Sciences, 63(1), 91-97.
Asociación Argentina de Productores de Siembra Directa (AAPRESID). (s.f.). Mapa de malezas resistentes. Recuperado de: https://www.aapresid.org.ar/rem/malezas#monitoreo
Aulakh, J., Chahal, P., Kumar, V., Price, A., y Guillard, K. (2021). Multiple herbicide-resistant Palmer amaranth (Amaranthus palmeri) in Connecticut: Confirmation and response to POST herbicides. Weed Technology, 35(3), 457-463, https://doi.org/10.1017/wet.2021.6
Barroso, J.; Navarrete, L.; Sánchez del Arco M.J.; Fernandez-Quintanilla, C.; Lutman, P.J.; Perry, N.H. y Hull, R.I. (2006). Dispersal of Avena fatua and Avena sterilis patches by natural dissemination, soil tillage and combine harvesters. Weed Research, 46(2), 118-128, https://doi.org/10.1111/j.1365-3180.2006.00500.x
Barroso, J., Andújar D., San Martín, C., Fernandez-Quintanilla C., y Dorado J. (2012). Johnson - grass (Sorghum halepense) Seed Dispersal in Corn Crops under Mediterranean Conditions. Weed Science 60, 34-41.
Brainard, D. C., Bellinder, R. R., Hahn, R. R., y Shah, D. A. (2008) Crop rotation, cover crop and weed management effects on weed seed banks and yields in snap bean, sweet corn and cabbage. Weed Science, 56, 434-441.
Chauhan, B.S., Ali, H.H. y Florentine, S. (2019). Seed germination ecology of Bidens pilosa and its implications for weed management. Science Reports 9, 16004. https://doi.org/10.1038/s41598-019-52620-9
Chahal, P.S., Aulakh, J.S., Jugulam, M., y Jhala, A. (2015). Herbicide-Resistant Palmer amaranth (Amaranthus palmeri S. Wats.) in the United States. En Price, A., Kelton, J., y Sarunaite, L. (Eds.) Mechanisms of Resistance, Impact, and m Management. IntechOpen. http://dx.doi.org/10.5772/61512
de la Fuente, E.B., Suarez, S.A., y Ghersa, C. M. (2006). Soybean weed community composition and richness between 1995 and 2003 in the Rolling Pampas (Argentina). Agriculture, Ecosystems and Environment, 115, 229–236, doi:10.1016/j.agee.2006.01.009
De Marco, N.; Sabattini, R.; Sione, S.; Ledesma, S.; Anglada, M.; Olea, I.; Sabaté, S.; Vincinguerra, H. y Lovato Echeverría, R. (2014). Echinochola colona (L.) Link; Echinochloa crusgalli (L.) P. Beav. Echinochloa cruspavonis (Kunth) Schult. En: Fernandez, O; Leguizamón, E. & Acciaresi, H. (Eds.) Malezas e invasoras III. (1ª. ed.; pp. 329-347). Ediuns.
Di Rienzo J.A., Casanoves F., Balzarini M.G., González L., Tablada M., y Robledo C.W. (2013). InfoStat (Internet). Versión 2013. Córdoba: Grupo InfoStat; 2013. http://www.infostat.com.ar
Díaz, J., Espinoza, N., & Galdames, R. (2009). Test de germinación in vitro para detectar malezas resistentes a herbicidas. Serie Actas - Instituto de Investigaciones Agropecuarias N° 44. https://hdl.handle.net/20.500.14001/8578
Engler, P., Rodríguez, M., Cancio, R., Handloser, M., y Vera, L.M. (2008). Zonas AgroEconómicas Homogéneas de Entre Ríos. Descripción Ambienta, socioeconómica y productiva. Recuperado de: https://inta.gob.ar/sites/default/files/script-tmp-inta_zonas_agroeconmicas_homogneas_entre_ros.pdf
Forcella, F., Peterson, D. H., y Barbour, J. C. (1996). Timing and measurement of weed seed shed in corn (Zea mays). Weed Technology, 10, 535–543, doi: 10.1017/S0890037X00040409
Foresto, E., Amuchástegui, M.A., Nuñez, O, y Zorza, E. (2021). Comportamiento del banco de semilla de malezas en un sistema agrícola-ganaderointervenido por diferentes tipos de labranzas. Ciencia e Interculturalidad, 28(01), 151-165. https://doi.org/10.5377/10.5377/rci.v28i01.11466
Gaweda, D., Haliniarz, M., Bronowicka-Mielniczuk, U., y Łukasz, J. (2020). Weed Infestation and Health of the Soybean Crop Depending on Cropping System and Tillage System. Agriculture, 10, 208, doi:10.3390/agriculture10060208.
Ghersa, C. M., y León, R.J.C. (1999). Successional changes in agroecosystems of the rolling pampas. En L.R. Walker (ed.). Ecosystems of the world. Ecosystems of disturbed ground (pp. 487-502). Elsevier.
Heap, I. (s.f.). The International Herbicide-Resistant Weed Database. Online. Recuperado de: https://www.weedscience.org/Pages/Species.aspx
International Rules for Seed Testing Association. (2023). Full Issue i–19-10 (308)
Kruk B.C. (2015). Disminución de la emergencia de malezas en diferentes escenarios agrícolas bajo siembra directa. Rev. Agronomía & Ambiente 35(2), 179-190.
Martínez-Ghersa, M.A., Ghersa C.M., y Satorre, E.H. (2000). Coevolution of agricultural systems and their weed companions: implications for research. Field Crops Research 67, 181-190.
Niño-Hernandez, J.C., Felipe Moreno, D., Ruiz-Berrío, H.D., Balaguera-López, H.E., y Magnitskiy, S. (2020). Luz, giberelinas y profundidad de siembra inciden sobre la germinación de semillas de Amaranthus hybridus L. Revista U.D.C.A Actualidad & Divulgación Científica, 23, 2, http://doi.org/10.31910/rudca.v23.n2.2020.1545.
Nisensohn, L. A., Tuesca, D., y Papa, J. C. (2011). Diferencias en la susceptibilidad al glifosato en plantas de Conyza bonariensis (L.) Cronquist y Conyza sumatrensis (Retz) con distinto grado de desarrollo. Revista Para Mejorar la Producción, 46, 105-108.
Papa, J.C., y Tuesca, D.H. (2008). Malezas del Cultivo de Soja. CREA Producción de Soja. pp 71-78
Pla, L. (2006). Biodiversidad: inferencia basada en el Ííndice de Shannon y la riqueza. INCI 3, 8
Poggio, S. (2012). Cambios florísticos en comunidades de malezas: un marco conceptual basado en reglas de ensamblaje. Ecología Austral, 22, 150-158.
Puricelli, E., y Tuesca, D. (2005). Efecto del sistema de labranza sobre la dinámica de la comunidad de malezas en trigo y en barbechos de secuencias de cultivos resistentes a glifosato. AgriScientia, 22(2). https://doi.org/10.31047/1668.298x.v22.n2.2682
Rao, A.N., Brainard, D.C., Kumar, V., Ladha, J.K., y Johnson, D.E. (2017). Chapter Two - Preventive Weed Management in Direct-Seeded Rice: Targeting the Weed Seedbank. Advances in Agronomy 144: 45-142. https://doi.org/10.1016/bs.agron.2017.02.002
Romagnoli, M. V., Tuesca, D., y Permingeat, H. R. (2013). Caracterización de la resistencia de Amaranthus quitensis a tres familias de herbicidas. Ecología Austral, 23(2), 119–125.
Sangoy Puntin, N., Poggio, S.L., y Coll, L. (2021). Productividad de soja de segunda y comunidades de malezas en sistemas de intensificación sustentable y de transición ecológica. En: ¿Cómo integramos la soja en los sistemas productivos? Avances y perspectivas en Entre Ríos (Ed. Santos, D.) Serie de Extensión INTA Paraná - Nº88.
Schwartz-Lazaro, L. M., Green, J. K., y Norsworthy, J. K. (2017). Seed retention of Palmer amaranth (Amaranthus palmeri) and barnyardgrass (Echinochloa crus-galli) in soybean. Weed Technology, 31, 617–622. https://doi.org/10.1017/wet.2017.25
Schwartz-Lazaro, L., LaBiche, G. y Copes, J.T. (2022). Detection of Foreign Material in Soybean (Glycine max) Grain. Frontiers in Agronomy, 4, 868573. doi: 10.3389/fagro.2022.868573.
Scursoni, J.A., Gigòn, R., Martìn, A. N., Vigna, M., Leguizamòn, C., y López Source, R. (2014). Changes in Weed Communities of Spring Wheat Crops of Buenos Aires Province. Weed Science, 62(1), 51-62. http://dx.doi.org/10.1614/WS-D-12-00141.1
Scursoni, J. A., Tuesca, D., Balassone, F., Morello, J. P., Herrera, D. M., Lescano, M. C., ... y Vila-Aiub, M. M. (2022). Response of smooth pigweed (Amaranthus hybridus) accessions from Argentina to herbicides from multiple sites of action. Weed Technology, 36(3), 384-389. https://doi.org/10.1017/wet.2022.9
Shannon, C.E., y Weaver, W. (1949) The mathematical theory of communication. University of Illinois Press. Urbana, IL, EEUU. 144 pp.
Sione, S. M. J., Ledesma, S.G., Rosenberger, L. G., Galliussi, R., y Sabattini, R. A. (2015). Banco de semillas del suelo, en relación a dos estados sucesionales del bosque nativo en Entre Ríos. Quebracho-Revista de Ciencias Forestales, 23(2), 62-76.
Tourn, S.N., Diez de Ulzurrum, P., Exilart, A., Lasaga, R., y Platz, J.P. (2018). Presencia y abundancia de semillas de malezas en máquinas cosechadoras. Malezas, 1, 6-11. https://doi.org/10.15258/istarules.2023.F
Tuesca, D., Puricelli, E. y Papa, J.C. (2001). A long-term study of weed flora shifts in different tillage systems. Weed Research, 41, 369-382.
Uztarroz, D., Kruk, B.C., Satorre, E. H., y Ghersa, C. M. (2016). Dormancy, germination and emergence of Urochloa panicoides regulated by temperature. Weed Research, 56(1), 59-68. https://doi.org/10.25260/EA.13.23.2.0.1176
Wilson, C. E., Castro, K. L., Thurston, G. B., y Sissons, A. (2016). Pathway risk analysis of weed seeds in imported grain: A Canadian perspective. NeoBiota, 30, 49–74. doi: 10.3897/neobiota.30.7502
Yannicari, M. (2014). Estudio fisiológico y genético de biotipos de Lolium perenne L. resistentes a glifosato. [Tesis Doctoral, Universidad Nacional de La Plata]. https://doi.org/10.35537/10915/37620
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